溷浊度和活菌数的关系(Relationship between
Turbidity and Live bacteria)
目的:
1. 了解无菌操作的方式
2. 了解溷浊度和活菌数目之间的关系
3. 瞭解如何做稀释
原理:
简介大肠杆菌(Escherchia coli)
大肠杆菌的品系(strains)
E. coli B/r (HB101) wild type
E. coli TOP10F’ F’{lacIq, Tn10(TetR)} mcrA△(mrr-hsdRMS-mcrBC) ψ80lacZ△M15
△lacX74 deoR recA1 araD139 △(ara-leu)7697 galU galK rpsL(StrR)
菌种的纯化( Strain purification)
1. Overnight culture (O/N) — 用接种环或药匙经消毒后,从甘油储存菌种或LB平板
上取出(沾一下)菌,接种于3-5 ml的LB(含有适当的氨基酸或是抗生素),在
37 ℃下震盪培养隔夜(14-18 小时)。
2. Dilution buffer — 灭菌过的100 mM MgSO4
3. Isolation of single colonies — 刚拿到手的菌种或是从甘油储存菌种要开始作实验
前,菌种需先纯化﹕用单一菌落﹔得到单一菌落的方法有二﹕(1)从O/N culture 用
100 mM MgSO4去做一连续的十倍稀释,用接种环从高稀释度开始取出稀释液,
涂抹在LB平板上﹔(2)用接种环沾取O/N culture或菌落涂抹在LB平板的一边
(a),接种环经消毒后,再从第一次涂抹的地方把菌涂抹开,以便得到单一菌
落(b1-b4)。若是新到手的菌种,在得到单一菌落后,先根据基因型去测试菌
种。
4. 菌种保存﹕glycerol (10%) or DMSO (7%) storage (at –70 ℃)
测量细菌的浓度 (cells/ml)
用溷浊度﹑细菌数目和活菌数目来测定。
溷浊度 — 其原理是可将细菌视为悬浮颗粒,这些颗粒可阻断光线的通过,因此
细菌浓度愈高,通过的光线愈少,就等于吸光值愈大,然而我们不认为它是吸
光值,只是细菌将光线散射掉了,因此我们用溷浊度表示﹔大多数时候我们是用
LB来培养E. coli,因为LB的颜色是黄色,所以用分光光度计去测量细菌浓度时,
波长选用600 nm﹔若是用minimal medium来培养E. coli,因为minimal medium的颜
色是无色,所以用分光光度计去测量细菌浓度时,波长选用460 nm。用溷浊度来
测量细菌的浓度只是估计值,正确数目则需用下列方法决定之。
细菌数目— 使用Petroff-Hauser Chamber在显微镜下数细菌的数目,在这
Chamber内约有100格,每格的体积为10 µl﹔在使用此Chamber需要将此玻片的两面
清乾淨,尤其不能有任何的纤维残留,因为纤维会将细菌和培养液分隔开而造成
菌数分配不均,进而影响精确度。盖玻片是否确实盖好也是影响精确度的重要因
子。
活菌数目— 上一项的方法将死和活的细菌数目均计算在内,所以活的细菌数目是
用一连续的稀释菌液后,取0.1 ml的稀释液涂抹在LB平板上等菌落长出后,数其
菌落数,即可推出每ml的活菌数目。
器材:
培养基(LB)
100 mM MgSO4溶液
37℃培养箱(incubator)
方法:
1. 向助教领取两种(年轻和年老)的菌液,分别作1/2(年轻)和1/4(年老)的稀
释,先用分光光度计以600 nm波长去测量稀释液的溷浊度,并纪录其值。
2. 用此数据1 OD600= 1-3 X 108 cells/ml去推算约略所需要的稀释度,以便在取用0.1
ml的稀释液去涂抹在LB平板时,可得到菌落数为30-300个。
3. 稀释菌液用10 mM MgSO4溶液。
4. 稀释后用三种连续稀释度,如10-1﹑10-2和10-3,取两次0.1 ml的稀释液分别去涂抹
在LB平板(共6个LB平板),等到LB平板上所有的液体不见后,将平板倒置并
放置于37 ℃培养箱,次日中午以前到助教处数菌落数。
5. 请讨论为何从年轻和年老的菌液所得的菌数有差异,和前面的实验又有何关联﹖
6. 请和实验一的数据作比较,提出一个假说。用下星期的实验数据来验证。
杀过菌的玻管
细菌展开用的玻棒
培养基平板